/ Каталог / Биология и биотехнология / Флуоресцентная микроскопия / FLIM и STED микроскопы / Времяразрешенный флуоресцентный микроскоп PicoQuant MicroTime 200

Времяразрешенный флуоресцентный микроскоп PicoQuant MicroTime 200

PicoQuant GmbH — компания, лидирующая в области создания импульсных диодных лазеров, сбора данных с временным разрешением, систем счета единичных фотонов и времяразрешенных флуоресцентных спектрометров и микроскопов, купить оборудование PicoQuant Времяразрешенный флуоресцентный микроскоп PicoQuant MicroTime 200 купить в Техноинфо

Времяразрешенный конфокальный флуоресцентный микроскоп с уникальной чувствительностью на уровне единичных молекул.

Запросить коммерческое предложение Запросить сервисную поддержку
  • Полностью конфокальная система, объединенная с лазерным блоком, инвертированным микроскопом и мультиканальным модулем детекции
  • Готовые к работе диодные лазеры для возбуждения на разных длинах волн от 375 до 900 нм
  • До 4х полностью параллельных каналов детекции с использованием оптимизированных через ПО ФЭУ, твердотельных (SPAD) и гибридных (Hybrid PMT) детекторов
  • Времяразрешенный подсчет единичных фотонов (Time-Correlated-Single Photon Counting, TCSPC) и режим TTTR для изучения быстрой динамики в режимах FCS и FLIM
  • Пьезо-сканирование для 2D и 3D-съемки времен жизни и точного позиционирования
  • Два дополнительных выходных порта для дополнительных модулей, например, спектрографов
  • Продвинутое и простое в управлении ПО для получения данных, анализа и визуализации SymPhoTime 64
  • Уникальные опции апгрейда до двухфокусного FCS, одновременного АСМ/FLIM, измерений в области УФ
  • Опция STED для флуоресцентной микроскопии сверхвысокого разрешения
  • Новый гальвосканер FLIMbee, сочетающий высокую скорость (возможности rapidFLIM) и точность позиционирования.

Основные компоненты MicroTime 200 являются самостоятельными блоками и могут быть модифицированы для максимального соответствия потребностям пользователей. Комплектация может быть дополнена пьезоэлементом PIFOC для высокоточной 3-мерной визуализации или гальвосканером, широкодиапазонным сканирующим столиком и другими опциями. Для подбора оптимальной конфигурации и расчета цены Вы можете оставить заявку на сайте.

Область применения: изучение оптических свойств одиночных атомов, молекул и наночастиц на подложках и в средах. Приложения в физике, химии, биологии, медицине, генно-инженерных технологиях, нанобезопасности и экологии:

  • Спектроскопия единичных молекул
  • Времяразрешенная флуоресценция
  • Картирование по временам жизни флуоресценции/фосфоресценции (fluorescence/phosphorescence lifetime imaging, FLIM/PLIM)
  • Флуоресцентная корреляционная спектроскопия (Fluorescence Correlation Spectroscopy, FCS)
  • Флуоресцентная корреляционная времяразрешенная спектроскопия (Fluorescence Lifetime Correlation Spectroscopy, FLCS)
  • Резонансный перенос энергии по Фёрстеру (Foerster Resonance Energy Transfer, FRET)
  • Двухфокусная флуоресцентная корреляционная спектроскопия (Dual-focus Fluorescence Correlation Spectroscopy, 2fFCS)
  • Импульсное переменное возбуждение (Pulsed Interleaved Excitation (PIE)
  • Анизотропия/поляризация флуоресценции
  • Анализ паттернов (pattern matching analysis)
  • Времяразрешенная фотолюминесценция (TRPL)
  • Картирование в режиме времяразрешенной фотолюминесценции
  • Antibunching
 
 

 

Приставка STED для MicroTime 200:

Система возбуждения
• Пикосекундные диодные лазеры (375 нм – 900 нм) с частотой повторов до 80 МГц внутри компактного блока лазеров.
• Одно- или многоканальный лазерный драйвер
• Опционально: возбуждение до 266 нм
• Опционально: внешний лазер (например, титан – сапфировый лазер)
 
Микроскоп
• Инвертированный микроскоп Olympus IX 73 или IX 83
• Правый порт специальной конструкции для конфокальной микроскопии
• Свободные левый порт и порт на задней панели (например, для широкопольной визуализации или TIRF)
• Предусмотрен блок проходящего света
• Специальный столик для ручного позиционирования образца с диапазоном 25 мм
• стандартный держатель образца для покровных стекол 20 мм x 20 мм
• Опционально: эпифлуоресцентное освещение, опционально: криостат для низкотемпературных измерений
• Опционально: комбинация с атомным силовым микроскопом (АСМ)
Объективы
• Безиммерсионные объективы с увеличением 20x и 40x (стандартные)
• Различные высокотехнологичные объективы (масляно-водяная иммерсия, с воздушным зазором, улучшенные для ИК/УФ, TIRF,
или длиннофокусные объективы)
 
Детекторы
• Однофотонные лавинные диоды (серия PDM, τ-SPAD)
• Фотоумножительные электронные устройства (серия PMA), гибридные фотоумножители (серия PMA Hybrid)
 
Сбор данных
• На основе метода подсчета единичных фотонов с временным коррелированием (TCSPC) в уникальном режиме с временной
привязкой и временным разрешением (TTTR)
• Одновременный сбор данных по каналам детектирования в количестве до 4 штук.
 
Сканирование
• Управляемое компьютером 2-мерное сканирование пьезо-объективом с диапазоном сканирования 80 мкм x 80 мкм с точностью позиционирования 1 нм
• PIFOC для 3-мерной визуализации, диапазон 80 мкм при номинальной точности позиционирования 1 нм
• Опционально: сканирование образца
• Опционально: столик сканирования большой площади с сантиметровым диапазоном
 
Главный оптический блок
• конфокальная установка детектирования в компактном корпусе с количеством параллельных каналов детектирования до 4 штук
• Специализированное высокотехнологичное дихроичное устройство с повышенной стабильностью
• Все оптические элементы являются легко доступными, регулируемыми и заменяемыми.
• Камера CCD для диагностики пучка и фотодиод для измерений относительной мощности
• Настраиваемые делители пучка и выходные порты для подключения внешних устройств
Программное обеспечение
• Простое в использовании и комплексное программное обеспечение для получения и анализа данных на базе Windows
• 1-, 2-, и 3-мерный сбор данных на основе универсального формата фалов TTTR
• Архивирование данных в рабочем пространстве, временной селектор для всех методов, функции экспорта данных, биннинг, подбор TCSPC (многоэкспоненциальное затухание (от 1 до 5 экспонент), подбор методом наименьших квадратов, подбор MLE, деконволюция IRF, подбор хвоста, анализ ошибок методом бутстрэп)
• Анализ точечного измерения: Подбор FCS, FCCS, FLCS, PIE-FCS, FCS (модели: диффузионные константы, триплетное состояние, конформационная, протонирование, функция рассеянной точки по Гауссу, анализ ошибок методом бутстрэп), калибровка FCS, корреляция антигруппировки/ совпадения, общая корреляция, мерцание (построение гистограмм для режимов вкл/выкл), гистограмма скорости импульсов (PCH), TCSPC с управляемой интенсивностью, отслеживание изменений времени жизни флуоресценции и интенсивности, гитограмма времени жизни, BIFL (комплексный анализ серии импульсов)
• Анализ изображений: FLIM, FLIM-FRET, FRET интенсивности, визуализация анизотропии, визуализация интенсивности флуоресценции (с временной синхронизацией), сопоставление изображений, область исследования (ROI)
• Язык написания сценариев (“STUPSLANG”) для пользовательских алгоритмов анализа, фиттинга и компонентов графического интерфейса.

 

Введение в микроскопию единичных молекул:

 

Silver-coated nanoporous gold skeletons for fluorescence amplification

Lee M.-J., Yang W.-G., Kim J.H., Hwang K., Chae W.-S. Microporous and Mesoporous Materials, Vol.237, p.60-64 (2017)

Reference to: MicroTime 200, SymPhoTime Related to: FLIM

Improving analytical methods for protein-protein interaction through implementation of chemically inducible dimerization

Andersen T.G., Nintemann S.J., Marek M., Halkier B.A., Schulz A., Burow M. Scientific Reports, Vol.006, 27766 (2016)

Reference to: MicroTime 200, LSM Upgrade Kit, SymPhoTime Related to: FLIM, FRET

Influence of plasmonic array geometry on energy transfer from a quantum well to a quantum dot layer

Higgins L.J., Morocico C.A., Karanikolas V.D., Bell A.P., Gough J.J., Murphy G.P., Parbrook P.J., Bradley A.L. Nanoscale, Vol.008, p.18170-18179 (2016)

Reference to: MicroTime 200 Related to: FRET, TRPL

Temperature-dependent luminescent decay properties of CdTe quantum dot monolayers: impact of concentration on carrier trapping

Murphy G.P., Zhang X., Bradley A.L. The Journal of Physical Chemistry C, Vol.120, p. 26490–26497 (2016)

Reference to: MicroTime 200 Related to: FLIM, TRPL

Ag colloids and arrays for plasmonic non-radiative energy transfer from quantum dots to a quantum well

Murphy G.P., Gough J.J., Higgins L.J., Karanikolas V.D., Wilson K.M., Garcia Coindreau J.A., Zubialevich V.Z., Parbrook P.J., Bradley A.L. Optics (2016)

Reference to: MicroTime 200 Related to: FLIM, TRPL

Molecular organization, localization and orientation of antifungal antibiotic amphotericin B in a single lipid bilayer

Grudzinski W., Sagan J., Welc R., Luchowski R., Gruszecki W.I. Scientific Reports, Vol.006, 32780 (2016)

Reference to: MicroTime 200, FluoTime 300 Related to: FLIM, Anisotropy

Spatial inhomogeneity in spectra and exciton dynamics in porphyrin micro-rods and micro-brushes: Confocal microscopy

Chattoraj S., Bhattacharyya K. Journal of Chemical Sciences, Vol.128, p.1717-1724 (2016)

Reference to: MicroTime 200 Related to: FLIM

Exploring the HYDRAtion method for loading siRNA on liposomes: the interplay between stability and biological activity in human undiluted ascites fluid

Dakwar G.R., Braeckmans K., Ceelen W., De Smedt S.C., Remaut K. Drug Delivery and Translational Research, Vol.007, p.241-251 (2016)

Reference to: LSM Upgrade Kit, SymPhoTime Related to: FCS

Determination of equilibrium and rate constants for complex formation by fluorescence correlation spectroscopy supplemented by dynamic light scattering and Taylor dispersion analysis

Zhang X., Poniewierski A., Jelińska A., Zagożdżon A., Wisniewska A., Hou S., Hołyst R. Soft Matter, Vol.012, p.8186-8194 (2016)

Reference to: PicoHarp 300, LSM Upgrade Kit, SymPhoTime Related to: FCS

Functional role of T-cell receptor nanoclusters in signal initiation and antigen discrimination

Pageon S.V., Tabarin T., Yamamoto Y., Ma Y., Nicovich P.R., Bridgeman J.S., Cohnen A., Benzing C., Gao Y., Crowther M.D., Tungatt K., Dolton G., Sewell A.K., Price D.A., Acuto O., Parton R.G., Gooding J.J., Rossy J,. Rossjohn J., Gaus K. PNAS, Vol.1113, p.5454-5463 (2016)

Reference to: MicroTime 200 Related to: FCS